产品手册

发布日期:2026/10/22 17:20:00

1. 产品订购信息(Ordering Information)

根据表格数据,本产品的规格及订购编号如下:

货号 (Cat. No.)

商品编号 (SKU)

产品英文名

中文名称

规格 (Size)

价格 (RMB)

来源 (Source)

纯度 (Purity)

FB0078

FB00781000

Cardiotoxin

心脏毒素

1 mg

¥ 2,000

中华眼镜蛇 (Naja atra)

≥95% (HPLC)

FB0078

FB00785000

Cardiotoxin

心脏毒素

5 mg

¥ 6,420

中华眼镜蛇 (Naja atra)

≥95% (HPLC)

FB0078

FB007810000

Cardiotoxin

心脏毒素

10 mg

¥ 9,860

中华眼镜蛇 (Naja atra)

≥95% (HPLC)

 

2. 产品概述与生物学特性(Product Overview)

心脏毒素(Cardiotoxin, CTX),又称蛇毒细胞毒素(Cytotoxin),是从中华眼镜蛇(Naja atra)毒液中精细分离纯化得到的一类富含半胱氨酸的碱性小分子多肽(三指毒素超家族,Three-finger toxin family)。

· 分子量:约6.5–7.0 kDa。

· 等电点(pI):>9.0(碱性蛋白)。

· 外观:白色或类白色冻干粉末。

· 溶解性:易溶于无菌超纯水或无菌PBS缓冲液。

核心生物学机制

· 细胞膜去极化与成孔作用:CTX能够与细胞膜上的阴离子磷脂(如磷脂酰丝氨酸PS)结合,破坏细胞膜双分子层结构,形成非特异性膜孔,导致细胞内外离子平衡失调。

· 引发钙内流与细胞坏死:诱导大量的外源性Ca²⁺瞬间内流,激活钙依赖性蛋白酶,破坏细胞骨架,快速引发细胞脱落、肿胀及坏死。

· 骨骼肌急性损伤“金标准”诱导剂:在骨骼肌局部注射后,CTX能选择性破坏骨骼肌肌纤维(Myofibers),但保留肌卫星细胞(Satellite cells)、基底膜及血管网,因此被国际学术界公认为构建骨骼肌损伤与再生(Skeletal Muscle Regeneration)模型的最经典诱导剂。

3. 主要应用场景(Applications)

· 骨骼肌急性损伤与再生模型构建(Muscle Injury & Regeneration Model):小鼠/大鼠胫骨前肌(TA肌)或股四头肌局部注射,研究干细胞分化、肌纤维修复及基因治疗。

· 心肌毒性与离子通道机制研究:研究Ca²⁺信号通路、膜离子通道及心肌细胞去极化损伤机制。

· 膜结构与细胞毒性生物学:作为细胞膜打孔与磷脂相互作用的工具蛋白。

4. 骨骼肌损伤再生模型构建SOP(小鼠胫骨前肌注射)

4.1 溶液配制

CTX母液配制(100 μM或1 mg/mL):取1 mg FB0078冻干粉,加入1.45 mL无菌超纯水或无菌PBS,轻柔颠倒混匀至完全溶解,配制成100 μM母液(或按质量配制1 mg/mL)。分装成50 μL/管,置于−80°C避光保存。

工作液配制(10 μM,小鼠注射常用浓度):取100 μM母液,用无菌PBS进行1:10稀释,现配现用。

4.2 小鼠胫骨前肌(TA Muscle)注射操作

· 麻醉与备皮:异氟烷麻醉C57BL/6小鼠,后肢胫骨前肌部位进行剃毛与酒精消毒。

· 注射剂量:使用31G绝细胰岛素针头,垂直或沿肌纤维方向缓慢注入30–50 μL的10 μM CTX工作液(每只小鼠约2–3.5 μg CTX)。

· 控制组(Control):对照侧肌肉注射同等体积的无菌PBS。

损伤与再生表型时间窗:

· 24–48小时:肌纤维完全坏死,大量中性粒细胞与巨噬细胞浸润。

· 第3–5天:肌卫星细胞激活并大量增殖分化,出现新生中央核肌纤维(Centronucleated fibers)。

· 第7–10天:肌肉结构大面积再生,坏死区域基本被新生肌纤维替代。

· 第14–21天:肌纤维成熟,生理功能基本恢复。

5. 存储、复溶与安全操作指南(Handling & Safety)

5.1 复溶与保存(Storage)

· 冻干粉保存:未复溶的冻干粉需在−20°C或−80°C干燥避光保存,有效期为24个月。

· 复溶后液体保存:配制成高浓度母液分装后,可在−80°C保存6个月。

· 注意:避免反复冻融(冻融次数不宜超过2次);稀释后的低浓度工作液建议当天使用,不宜长期保存。

5.2 安全防护与毒性警示(重要!)

剧毒警示:心脏毒素(Cardiotoxin)具有很强的细胞毒性与心脏/肌肉毒性,极微量皮肤刺伤或误吸入可能导致局部肌肉严重坏死或全身性毒性反应。

· 实验人员必须佩戴双层手套、口罩、护目镜及实验服。

· 液体配制与注射操作须在生物安全柜或通风橱内进行。

· 针头注射时谨防刺伤手部;注射完毕后针头须直接丢入利器盒,不得二次套上针头帽。

· 含有毒素的废液及离心管需用高浓度次氯酸钠(NaClO)浸泡过夜灭活后处理。

6. 常见问题排查(Troubleshooting)

异常现象

可能原因

解决建议

1. 小鼠TA肌损伤不均匀或损伤范围过小

① 注射深度未深入肌腹;② 注射体积过小或CTX工作液浓度偏低;③ 针头推注速度过快导致液体溢出肌肉。

① 注射时感受针头进入肌肉层的阻力,确保进入肌腹中部;② 将浓度调整至10 μM,注射体积固定为40–50 μL/侧;③ 推注后停顿5–10秒再缓慢拔针,防止药液渗漏。

2. 注射后小鼠出现全身毒性死亡

① CTX误注入血管(如胫前动静脉);② 单侧/双侧注射总剂量过高。

① 进针后可轻微回抽,确认无回血后再缓慢推注;② 单只小鼠单侧肌肉注射总量建议控制在≤3.5 μg(10 μM,50 μL)。

3. 复溶后液体出现不溶物或沉淀

① 使用了含高浓度盐或低pH的不当缓冲液;② 蛋白未完全溶解。

① 优先使用无菌超纯水或standard PBS(pH 7.4)进行复溶;② 加水后室温静置10分钟,轻柔颠倒混匀,严禁剧烈震荡。

 

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